细胞死亡异常是自身免疫病脏器损伤的主要原因。目前公认的Okamoto学说认为:损伤引起细胞DNA链断裂,进而激活PARP以NAD+为底物进行修复,PARP过度激活导致NAD+耗竭,细胞在合成NAD+的过程中因能量衰竭而死亡。CD38表达于各种细胞,底物也是NAD+。CD38通过消耗NAD+调控细胞内外NAD+水平。研究证明CD38基因敲除小鼠脏器与血清内NAD+水平明显升高。依照Okamoto学说,CD38基因敲除后,NAD+水平增高,损伤刺激下细胞死亡应该减少,但我们的预实验发现CD38基因敲除后虽然NAD+水平增高,细胞死亡反而增加,说明细胞内补充NAD+并不能挽救DNA损伤引起的细胞死亡。本课题将利用CD38基因敲除小鼠MEF细胞深入研究NAD+在损伤导致细胞死亡过程中的意义,探寻细胞死亡非NAD+途径的信号通路,进而为研究自身免疫病发病机制,寻找干预自身免疫病的新靶点提供理论依据。
本实验利用CD38-KO小鼠和相同基因背景WT小鼠进行实验,在确定CD38-KO为纯合子基因型小鼠后,首先测定MEF细胞内NAD+水平,结果发现CD38-KO MEF细胞内NAD+水平明显高于WT;用0.4mM浓度H2O2刺激后发现CD38-KO组NAD+水平仍然明显高于WT。再用多种浓度H2O2刺激两组细胞死亡,发现CD38-KO MEF细胞死亡数量均较WT明显增加。上述结果提示CD38-KO MEF细胞内NAD+水平在受到DNA损伤刺激时是增高的,按照Okamoto学说应该推论出CD38-KO组NAD+较WT组更不易耗竭,细胞死亡数量应该较WT组少,但实验结果却相反,发现CD38-KO组细胞死亡较WT组明显增加。由此,我们推测DNA损伤所致细胞死亡的原因并非NAD+耗竭,NAD+在DNA损伤所致的细胞死亡中不扮演重要角色。继而,采用不同浓度 H2O2刺激下CD38-KO和WT MEF细胞内PARP活性测定,以及加用PARP抑制剂DPQ后不同浓度H2O2刺激细胞死亡实验。结果发现CD38-KO和WT细胞内PARP活性随着H2O2浓度的递增而增高;CD38-KO 的PARP活性,在各H2O2浓度组均较WT高。加用DPQ后CD38-KO在各浓度H2O2组细胞死亡数量均分别较无DPQ刺激时明显减少。结果提示DNA损伤刺激越强,PARP活性越强,细胞死亡数量越多;加用DPQ后,PARP活性减少,细胞死亡数量明显减少。由此可见,PARP激活与细胞死亡密切相关。最后,测定0.4mM H2O2刺激下CD38-KO和WT MEF细胞内重要抗凋亡分子pAKT-ser473和BCL-xl水平,发现pAKT-Ser473在CD38-KO组表达明显弱于WT组,BCL-xl在两组间表达差异无统计学意义。加DPQ后,pAKT-Ser473在CD38-KO组表达较不加DPQ时明显增加,加DPQ后,pAKT-Ser473在CD38-KO组和WT组表达差异无统计学差异,BCL-xl在CD38-KO和WT组加DPQ前后均无明显变化。上述结果提示H2O2刺激下PARP过度激活后通过下调抗凋亡分子pAKT-Ser473的表达来促进细胞凋亡,而不通过调节抗凋亡分子BCL-xl的表达来调控凋亡。
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数据更新时间:2023-05-31
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